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              發布時間:2020-12-10 07:49  









              Tris試劑桶裝,在病毒保存液中,加入Tris首先可以維持采樣樣本的pH值,起到生物緩沖劑的效果,病毒及其核酸對環境pH是比較敏感的,核酸(DNA、RNA)在酸性溶液中易水解,在中性或弱堿性溶液中較穩定。而Tris三羥,PH緩沖范圍:7.0-9.0,能夠維持待提取樣品裂解后釋放的核酸的穩定性,以避免核酸的降解,提高核酸的濃度和純度,有利于提高核酸的質量,保證后續核酸檢測分析等操作的準確性。






              Tris-HCl緩沖液的缺點:1、緩沖液的pH值受溶液濃度影響較大,緩沖液稀釋十倍,pH值的變化大于0.1;2、溫度效應大,溫度變化對緩沖液pH值的影響很大,即:△pKa/℃=-0.031 ,例如:4℃時緩沖液的pH=8.4,則37℃時的pH=7.4,所以一定要在使用溫度下進行配制,室溫下配制的Tris-HCl緩沖液不能用于0℃~4℃。3、易吸收空氣中的CO2,所以配制的緩沖液要蓋嚴密封。





              一旦確定了緩沖液的pH值,就需要選擇使用什么樣的緩沖體系。首先是在選擇緩沖體系時要確保選擇的緩沖體系在你設定的pH值上確實具有緩沖能力。選擇的緩沖體系,其解離常數pKa值應該在設定的pH上下一個pH值單位內。

                   再者是確保你使用的緩沖液濃度足夠高以達到實際緩沖溶液的作用,正常一般選擇的濃度是20~100mM。需要記住的是你所使用的緩沖體系不應該影響蛋白活性!例如,磷酸鹽會抑制激酶的活性,所以反應前應徹底地透析掉。




               此外,一些緩沖體系對溫度非常敏感,例如Tris-HCl緩沖液,如果你在25℃時將緩沖體系調至pH值8,pH值將在5℃時增加到8.58而在37℃時降到7.71。所以,如果打算在4℃條件下保存蛋白或在37℃進行實驗,就應該考慮到室溫下調的pH值可能在實驗條件中就不適用了。  其他類型的色譜分離柱,如凝膠過濾柱和Ni2 親和層析柱,可能需要更高的鹽濃度。我一般用高達500 mM NaCl進行高鹽淋洗,以防止蛋白和柱之間的非特異性結合。


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