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TE緩沖液 Tris鹽酸緩沖液中加入EDTA制成“TE緩沖液”，TE緩沖液是弱堿性，對DNA的堿基有保護性，因此，DNA在TE中的穩定性較好，不易被破壞完整性或產生開環及斷裂，TE緩沖液被用于DNA的穩定和儲存。

將調節pH值的酸溶液換成，則獲得“TAE緩沖液”（Tris/Acetate/EDTA），TAE是使用廣泛的緩沖系統。其特點是超螺旋在其中電泳時更符合實際相對分子質量，且雙鏈線狀DNA在其中的遷移率也較快，電泳大于13kb的片段時用TAE緩沖液將取得更好的分離效果。

   蛋白制備及純化過程中緩沖液的選擇非常重要，合適緩沖液才能保證蛋白的活性和結構穩定。

      當我們純化蛋白時，的就是要保持蛋白在純化過程中不能失活，或者是盡量降低純化過程對蛋白活性帶來的損失。這就意味著蛋白在整個純化過程中要始終保持可溶性和活性。

       因此設計一個防止蛋解和聚合的蛋白純化緩沖體系就非常重要了，尤其會凸顯在實驗結果上。在設計緩沖buffer時應考慮以下幾個因素：pH值、緩沖體系、鹽離子、還原劑和穩定劑。其中每一個因素都要根據你的目的蛋白進行優化，并以目的蛋白的活性作為優化的評估標準。

1mol/L HEPES：將23.8gHEPES溶于約90ml的水中，用NaOH調pH（6.8-8.2），然后用水定容至100ml。

1mol/L HCl：加8.6ml的濃鹽酸至91.4ml的水中。

25mg/ml IPGT：溶解250mg的IPGT（-β-D-半乳糖苷）于10ml水中，分成小份貯存于-20℃。

1mol/LMgCl2:溶解20.3g MgCl2·6H2O于足量的水中，定容到100ml。

100mmol/L PMSF：溶解174mg的PMSF（苯）于足量的異中，定容到10ml。分成小份并用鋁箔將裝液管包裹

或貯存于-20℃。